21-05-09
PRACTICA 7 OBSERVACION MICROSCOPICA EN ONBETIVO DE 100x con
Aceite de palo (aceite de inmersión)
Una vez terminada la tinción en la laminilla de cristal séle aplica una jota de aceite de inmersión para poder observarlo
MATERIALES.
Laminilla de cristal teñida
Aceite de inmersión
Hoja de papel para limpiar el microscopio (compuesto o fotónico)
Torunda de algodón seca y con alcohol
Papel secante
DESARROLLO:
1 la laminilla séle deposita una jota de inmersión
2 se monta la laminilla al microscopio sobre la platina y que quede bien ajustada con las pinzas de la platina.
3 observamos en el objetivo de 100x para poder clasificar las estructuras de los microorganismos encontrados que son esferas, rueditas o bolitas en 1, 2, 3,4, en cadena de 5 o 6 o agrupadas en bastones y séles del nombre de bacilos y rueditas.
sábado, 23 de mayo de 2009
III UNIDAD practica numero 6 TINCION DE GRAM 21-05-09
PRACTICA 6 TINCION DE GRAM. 21-05-09
El alumno debe investigar el tema de tinción de gram. Que se utiliza para bacterias Gram. Positivas y Gram. Negativas.
Este trabajo de investigación es vital para poder realizar la secuencia de la técnica de tinción de esta practica del medio de cultivo.
MATERIALES:
Frotis realizado y fijado en portaobjetos, el cual debe pasar al proceso de tinción utilizando la técnica de forma correcta y anteriormente investigada.
Esta técnica se basa en 9 pasos donde se aplican los tiempos necesarios.
El frotis debe pasarse en el proceso de tinción sin pasar de los tiempos indicados ya que se puede quemar el producto realizado lo que ocasionaría volverlo a realizar desde el principio (debemos hacer bien las cosas ya que el tiempo es el enemigo),
Si el frotis queda bien teñido se dejara listo para el siguiente proceso que es la observación microscópica.
El alumno debe investigar el tema de tinción de gram. Que se utiliza para bacterias Gram. Positivas y Gram. Negativas.
Este trabajo de investigación es vital para poder realizar la secuencia de la técnica de tinción de esta practica del medio de cultivo.
MATERIALES:
Frotis realizado y fijado en portaobjetos, el cual debe pasar al proceso de tinción utilizando la técnica de forma correcta y anteriormente investigada.
Esta técnica se basa en 9 pasos donde se aplican los tiempos necesarios.
El frotis debe pasarse en el proceso de tinción sin pasar de los tiempos indicados ya que se puede quemar el producto realizado lo que ocasionaría volverlo a realizar desde el principio (debemos hacer bien las cosas ya que el tiempo es el enemigo),
Si el frotis queda bien teñido se dejara listo para el siguiente proceso que es la observación microscópica.
III UNIDAD practica numero 5 elaboracion de un frotis 21-05-09.
PRACTICA 5 ELABORACION DE UN FROTIS. 21-05-09
El alumno de laboratorio de análisis clínicos debe realizar un trabajo de investigación muy sencillo en materia de frotis el cual después de su investigación bibliográfica debe realizar de forma práctica.
MATERIALES:
Cajas petri con medio de cultivo y microorganismos en desarrollo(los que crecieron)
Asa bacteriológica de platino
Mecheros de bunsen
Vaso de precipitado de 50ml
25ml de agua destilada en el vaso de precipitado
Torundas de algodón
Portaobjetos.
DESARROLLO
1 con el asa bacteriológica se va a realizar un frotis en un portaobjetos de cristal.
2 se toma el asa bacteriológica se pone en la flama del mechero dejándola al rojo vivo para que se esterilicé, se retira del fuego, se toma una pequeña gota de agua destilada, con ella misma se extrae una pequeña muestra del material bacteriológico crecido en las cajas petri.
Unas ves teniendo este material en el asa se acude a depositarlo en el portaobjetos en su parte central.
Desplazando de izquierda a derecha el material bacteriológico hasta que quede una película delgada, una ves teniéndola verificamos con el instructor si ya esta lista para poder fijarla al calor.
Ya realizado el frotis se fija de forma directa, se toma el portaobjetos en sus partes alo largo para su transporte.
Se toma el portaobjetos de forma lateral para poderlo pasar encima de la llama nunca dejar en forma directa en la flama.
Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción.
El alumno de laboratorio de análisis clínicos debe realizar un trabajo de investigación muy sencillo en materia de frotis el cual después de su investigación bibliográfica debe realizar de forma práctica.
MATERIALES:
Cajas petri con medio de cultivo y microorganismos en desarrollo(los que crecieron)
Asa bacteriológica de platino
Mecheros de bunsen
Vaso de precipitado de 50ml
25ml de agua destilada en el vaso de precipitado
Torundas de algodón
Portaobjetos.
DESARROLLO
1 con el asa bacteriológica se va a realizar un frotis en un portaobjetos de cristal.
2 se toma el asa bacteriológica se pone en la flama del mechero dejándola al rojo vivo para que se esterilicé, se retira del fuego, se toma una pequeña gota de agua destilada, con ella misma se extrae una pequeña muestra del material bacteriológico crecido en las cajas petri.
Unas ves teniendo este material en el asa se acude a depositarlo en el portaobjetos en su parte central.
Desplazando de izquierda a derecha el material bacteriológico hasta que quede una película delgada, una ves teniéndola verificamos con el instructor si ya esta lista para poder fijarla al calor.
Ya realizado el frotis se fija de forma directa, se toma el portaobjetos en sus partes alo largo para su transporte.
Se toma el portaobjetos de forma lateral para poderlo pasar encima de la llama nunca dejar en forma directa en la flama.
Una vez fijado el frotis queda listo para el proceso de tinción.
III UNIDAD practica numero 4 OBSERVACION MICROSCOPICA DE CAJAS PETRI 21-05-09
Practica 4 observación microscópica de cajas petri 21-05-09
MATERIALES
1 solicitar las cajas petri ya con medio de cultivo elaborado
2 vernier o pie de rey
3 4 torundas de algodón seco
4 torundas de algodón alcoholizadas
5 registrar observaciones en cajas petri
6 2 mecheros de bunsen
DESARROLLO
1 se deposita las cajas petri en mesa de laboratorio para su observación, previamente la mesa vestida de papel blanco
2 observamos de forma microscópica los crecimientos de microorganismos en medio del cultivo anotando colores, olores, dimensión desde la mas pequeña hasta la mas grande, para ello necesitamos abrir la caja en nuestro campo de esterilización a base de los 2 mecheros
3para poder medir las colonias de microorganismos utilizaremos una herramienta de medición denominada vernier, medimos y anotamos con su prespectivo grafico
NOTA: para poder realizar todos los trabajos en borrador y que sus gráficos sean presentes debemos contar con colores y bicolores y para poderlo subir al blog tomar gráficos de cámara fotográfica.
4 cada grafico debe llevar el pie de grafico o pie de foto donde nos indica la información de lo que estamos plasmando.
MATERIALES
1 solicitar las cajas petri ya con medio de cultivo elaborado
2 vernier o pie de rey
3 4 torundas de algodón seco
4 torundas de algodón alcoholizadas
5 registrar observaciones en cajas petri
6 2 mecheros de bunsen
DESARROLLO
1 se deposita las cajas petri en mesa de laboratorio para su observación, previamente la mesa vestida de papel blanco
2 observamos de forma microscópica los crecimientos de microorganismos en medio del cultivo anotando colores, olores, dimensión desde la mas pequeña hasta la mas grande, para ello necesitamos abrir la caja en nuestro campo de esterilización a base de los 2 mecheros
3para poder medir las colonias de microorganismos utilizaremos una herramienta de medición denominada vernier, medimos y anotamos con su prespectivo grafico
NOTA: para poder realizar todos los trabajos en borrador y que sus gráficos sean presentes debemos contar con colores y bicolores y para poderlo subir al blog tomar gráficos de cámara fotográfica.
4 cada grafico debe llevar el pie de grafico o pie de foto donde nos indica la información de lo que estamos plasmando.
III UNIDAD PRACTICA 3 siembra 18-05-09
PRACTICA 2 siembra 18-05.09
Materiales
1 asa
2 vasos de precipitado con agua destilada (15 a 20 ml)
3 mecheros de bunsen
4 cajas petri con medio de cultivo elaborado
5 papel para cubrir mesa de laboratorio
6 masquintape para etiquetar cajas petri
7 jeringa desechable (5ml)
8 torniquetes
9 torundas de algodón alcoholizadas
10 tubos de ensaye (tapón rojo)
11 centrifuga
12 tubo cónico para orina
13 cubreobjeto y portaobjeto
Muestras de producto de desecho
1 toma de muestra (2.5ml de sangre) se deposita en el tubo de tapón rojo
2 orina (6 botes para orina) 1 portaobjeto
3 muestra de cavidad oral en espacios interdentales (hisopos)
4 agua preparada en la calle (aguas frescas)
5 raspado interdigital con portaobjetos.
Desarrollo:
Se realiza el proceso de siembra por estrías en medio de cultivo que contiene las cajas petri siendo este sólido.
Se utiliza el asa bacteriológica, pasándola por el mechero y al ponerse al rojo vivo esta queda esterilizada. Una ve esterilizada el asa se toma una pequeña gota de agua destilada y se pasa a tomar la muestra de desecho que se pretende observar esto es en 2 materiales de preferencia sólidos.
Para los materiales líquidos solo se esteriliza, se toma el producto y se aplica en la caja petri realizando una siembra en forma de estrías de los 7 tipos mostrados en el pizarrón.
Para poder sembrar una muestra de caveado de oral de espacio interdental se requiere un hisopo esterilizado, tomando la muestra del paciente en su cavidad oral y se aplica en caja petri en forma de estriado. Dentro de los 7 modelos de siembra, uno de ellos requiere varilla de cristal para poder sembrar el producto el cual séle da el nombre de siembra de dispersión.
Las cajas petri sembradas se deben depositar en la estufa de incubación a 37 grados centígrados.
Durante el proceso practico debemos realizar nuestra bitácora de actividades, elaborando en 1 hoja cuadriculada para asignar cada una de la actividades enumeradas llevando secuencia en tiempos y en la cual debemos anotar fechas de trabajo realizado.
Materiales
1 asa
2 vasos de precipitado con agua destilada (15 a 20 ml)
3 mecheros de bunsen
4 cajas petri con medio de cultivo elaborado
5 papel para cubrir mesa de laboratorio
6 masquintape para etiquetar cajas petri
7 jeringa desechable (5ml)
8 torniquetes
9 torundas de algodón alcoholizadas
10 tubos de ensaye (tapón rojo)
11 centrifuga
12 tubo cónico para orina
13 cubreobjeto y portaobjeto
Muestras de producto de desecho
1 toma de muestra (2.5ml de sangre) se deposita en el tubo de tapón rojo
2 orina (6 botes para orina) 1 portaobjeto
3 muestra de cavidad oral en espacios interdentales (hisopos)
4 agua preparada en la calle (aguas frescas)
5 raspado interdigital con portaobjetos.
Desarrollo:
Se realiza el proceso de siembra por estrías en medio de cultivo que contiene las cajas petri siendo este sólido.
Se utiliza el asa bacteriológica, pasándola por el mechero y al ponerse al rojo vivo esta queda esterilizada. Una ve esterilizada el asa se toma una pequeña gota de agua destilada y se pasa a tomar la muestra de desecho que se pretende observar esto es en 2 materiales de preferencia sólidos.
Para los materiales líquidos solo se esteriliza, se toma el producto y se aplica en la caja petri realizando una siembra en forma de estrías de los 7 tipos mostrados en el pizarrón.
Para poder sembrar una muestra de caveado de oral de espacio interdental se requiere un hisopo esterilizado, tomando la muestra del paciente en su cavidad oral y se aplica en caja petri en forma de estriado. Dentro de los 7 modelos de siembra, uno de ellos requiere varilla de cristal para poder sembrar el producto el cual séle da el nombre de siembra de dispersión.
Las cajas petri sembradas se deben depositar en la estufa de incubación a 37 grados centígrados.
Durante el proceso practico debemos realizar nuestra bitácora de actividades, elaborando en 1 hoja cuadriculada para asignar cada una de la actividades enumeradas llevando secuencia en tiempos y en la cual debemos anotar fechas de trabajo realizado.
martes, 19 de mayo de 2009
III UNIDAD practica numero 2 TECNICA DE ESTERILIZACION14-05-09
Técnicas de esterilización (calor húmedo) PRACTICA 2
Se esteriliza el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120 grados centígrados durante 20 minutos.
Una vez terminada la esterilización se deja enfriar, el producto se libera de la autoclave, se entrega a las mesas y se hará el vaciado en cajas petri.
Para el vaciado en cajas petri se requiere un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto este en el centro del campo de esterilización del mechero.
11 Se utiliza el vaso de precipitado de 250 ml el cual se pasara en forma breve por el fuego, para que este esterilizado (se pasara con la boquilla abierta) séle vierte el producto con la cantidad requerida y se vacía el producto con la cantidad requerida y se vacía ala caja petri, dejándola abierta con su tapa sobrepuesta asta que se enfríe, esto se hará las veces necesarias en nado de cajas.
Ya estando sólido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador, con el nombre de la mesa, grupo, datos del medio de cultivo.
Conclusiones de la practica, bibliografía de los medios de cultivo, glosario.
Se esteriliza el producto a 15 libras de presión y una temperatura de 120 grados centígrados durante 20 minutos.
Una vez terminada la esterilización se deja enfriar, el producto se libera de la autoclave, se entrega a las mesas y se hará el vaciado en cajas petri.
Para el vaciado en cajas petri se requiere un campo de esterilización en la mesa con 2 mecheros para que el producto este en el centro del campo de esterilización del mechero.
11 Se utiliza el vaso de precipitado de 250 ml el cual se pasara en forma breve por el fuego, para que este esterilizado (se pasara con la boquilla abierta) séle vierte el producto con la cantidad requerida y se vacía el producto con la cantidad requerida y se vacía ala caja petri, dejándola abierta con su tapa sobrepuesta asta que se enfríe, esto se hará las veces necesarias en nado de cajas.
Ya estando sólido el medio de cultivo se tapa, se etiqueta y se deposita en el enfriador, con el nombre de la mesa, grupo, datos del medio de cultivo.
Conclusiones de la practica, bibliografía de los medios de cultivo, glosario.
domingo, 17 de mayo de 2009
III UNIDAD caracteristicas morfologicas y coloniales de microorganismos
ACTIVIDAD 5 III UNIDAD 18-05-09
PARAMECIUM:
Características morfológicas: Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles.
En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleo eucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente.
Características coloniales: Es un ciliado común en las aguas dulces que contienen restos vegetales es putrefacción. En el laboratorio se multiplican rápidamente en una infusión preparada hirviendo un poco de paja o algunos granos de trigo en agua.
ECSCHERICHIA COLI:
Características morfológicas: Ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo. Además produce vitaminas B y K. Es un bacilo que reacciona negativamente a la tinción de Gram (gramnegativo), es anaeróbico facultativo, móvil por flagelos peritricos (que rodean su cuerpo), no forma esporas, es capaz de fermentar la glucosa y la lactosa y su prueba de IMVIC es ++--.
Características coloniales: La Escherichia coli es capaz de formar con una fina película colonias encapsuladas entre las células epiteliales de la vejiga que protruyen hacia el lumen como microampollas y resisten a los antibióticos y a la inflamación.
SALMONELLA
Características morfológica., formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
caracteristicas coloniales de la salmonella: Inocular en superficie por estría a partir de un medio de enriquecimiento selectivo
Utilizado para la detección de Salmonella.
- Incubar a 37°C durante 24 horas.
Microorganismos Características de la
Colonia
Salmonella spp. (Incluyendo S. Typhi, Paratyphi, lactosapositiva,
sucrosa-positiva) magenta
BRUCELLA
Características morfológicas: Brucella abortus son Gram-negativas en forma de vara de bacterias que no tienen flagelos o pili, ni crear cápsula limo. They also does not produce spores. Asimismo, no produce esporas. This heterotrophic bacteria carries out either aerobic or anaerobic respiration because it is a facultative bacterium (5). Esta bacterias heterótrofas realiza bien la respiración aeróbica o anaeróbica, ya que es una bacteria facultativa (5). This means that the bacteria can grow with or without oxygen present. Esto significa que las bacterias pueden crecer con o sin oxígeno. In order to grow Brucella abortus , a very complex media is required, because it is a fastidious bacteria that requires most essential nutrients to be imported into the cell from the host (4). Para crecer Brucella abortus, un complejo de medios de comunicación es muy necesaria, porque es una bacteria fastidiosa que requiere más nutrientes esenciales a ser importados en la célula del huésped (4). Although it is a fastidious bacteria, Brucella abortus does have “all major biosynthetic pathways” (5) available to it. Aunque se trata de un fastidioso bacterias, Brucella abortus tiene "todas las principales vías de biosíntesi, son cocobacitos muy pequeños(0.4 por 0.8, um)
Características coloniales: las colonias son no pigmentadas y no hemolíticas: aparecen como colonias puntiformes después de 48 horas de incubación.
PROTEUS
Características morfológicas;
La estructura antigénica está compuesta por antígeno somático O, flagelar H y superficial K. El antígeno flagelar H contribuye a la capacidad invasora de las vías urinarias. La variante X del antígeno somático O está presente en algunas cepas de P. mirabilis.
Características coloniales: Crecen en medios corrientes y moderadamente selectivos a temperatura corporal de 37ºC. Crecen formando capas diseminadas por virtud de su gran motilidad. Existen variantes inmóviles que forman colonias lisas
Microorganismos Características de la
Colonia
Salmonella spp. (Incluyendo S. Typhi, Paratyphi, lactosapositiva,
sucrosa-positiva) magenta
Escherichia coli incolora
Enterobacter spp., Klebsiella spp. azul-verde
Proteus spp. Incolora a marronosa
Pseudomonas spp. Y otras bacterias Gram positivas inhibid
TAXONOMICO: se emplea el término para designar a la taxonomía biológica, la ciencia de ordenar a los organismos en un sistema de clasificación compuesto por una jerarquía de taxones anidados
Fichas taxonómicas:
PROTEUS:
Dominio:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Proteus
PARAMECIUM
Reino:
Protista
Filo:
Ciliophora
Clase:
Oligohymenophorea
Orden:
Peniculida
Familia:
Parameciidae
Género:
Paramecium
ESCHERICHIA COLI
Reino:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Escherichia
SALMONELLA
Reino:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Salmonella
BRUCELLA
Dominio:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Proteobacteria alfa
Orden:
Rhizobiales
Familia:
Brucellaceae
Género:
Brucella
PARAMECIUM:
Características morfológicas: Carecen de flagelos, pero los cilios son muy abundantes y recubren toda su superficie. A ellos les corresponde proporcionar movimiento al organismo. La membrana externa absorbe y expulsa regularmente el agua del exterior con el fin de controlar la osmorregulación, proceso dirigido por dos vacuolas contráctiles.
En su anatomía destaca el citostoma, una especie de invaginación situada a todo lo largo del paramecio de la que éste se sirve para capturar el alimento, conformado por partículas orgánicas flotantes y microorganismos menores. El citostoma conduce a una citofaringe antes de que el alimento pase al interior de este protozoo. Otros orgánulos de fácil observación son el núcleo eucariota, situado junto a un "micronúcleo" en el centro del paramecio, y las vacuolas digestivas, que digieren constantemente el alimento capturado. Los desechos se expulsan por exocitosis, mediante vacuolas de secreción que se originan a partir de las digestivas.
Como muchos otros microorganismos, los paramecios se reproducen asexualmente.
Características coloniales: Es un ciliado común en las aguas dulces que contienen restos vegetales es putrefacción. En el laboratorio se multiplican rápidamente en una infusión preparada hirviendo un poco de paja o algunos granos de trigo en agua.
ECSCHERICHIA COLI:
Características morfológicas: Ésta y otras bacterias son necesarias para el funcionamiento correcto del proceso digestivo. Además produce vitaminas B y K. Es un bacilo que reacciona negativamente a la tinción de Gram (gramnegativo), es anaeróbico facultativo, móvil por flagelos peritricos (que rodean su cuerpo), no forma esporas, es capaz de fermentar la glucosa y la lactosa y su prueba de IMVIC es ++--.
Características coloniales: La Escherichia coli es capaz de formar con una fina película colonias encapsuladas entre las células epiteliales de la vejiga que protruyen hacia el lumen como microampollas y resisten a los antibióticos y a la inflamación.
SALMONELLA
Características morfológica., formado por bacilos gramnegativos, anaerobios facultativos, con flagelos perítricos y que no desarrollan cápsula ni esporas. Son bacterias móviles que producen sulfuro de hidrógeno (H2S). Fermentan glucosa por poseer una enzima especializada, pero no lactosa, y no producen ureasa.
caracteristicas coloniales de la salmonella: Inocular en superficie por estría a partir de un medio de enriquecimiento selectivo
Utilizado para la detección de Salmonella.
- Incubar a 37°C durante 24 horas.
Microorganismos Características de la
Colonia
Salmonella spp. (Incluyendo S. Typhi, Paratyphi, lactosapositiva,
sucrosa-positiva) magenta
BRUCELLA
Características morfológicas: Brucella abortus son Gram-negativas en forma de vara de bacterias que no tienen flagelos o pili, ni crear cápsula limo. They also does not produce spores. Asimismo, no produce esporas. This heterotrophic bacteria carries out either aerobic or anaerobic respiration because it is a facultative bacterium (5). Esta bacterias heterótrofas realiza bien la respiración aeróbica o anaeróbica, ya que es una bacteria facultativa (5). This means that the bacteria can grow with or without oxygen present. Esto significa que las bacterias pueden crecer con o sin oxígeno. In order to grow Brucella abortus , a very complex media is required, because it is a fastidious bacteria that requires most essential nutrients to be imported into the cell from the host (4). Para crecer Brucella abortus, un complejo de medios de comunicación es muy necesaria, porque es una bacteria fastidiosa que requiere más nutrientes esenciales a ser importados en la célula del huésped (4). Although it is a fastidious bacteria, Brucella abortus does have “all major biosynthetic pathways” (5) available to it. Aunque se trata de un fastidioso bacterias, Brucella abortus tiene "todas las principales vías de biosíntesi, son cocobacitos muy pequeños(0.4 por 0.8, um)
Características coloniales: las colonias son no pigmentadas y no hemolíticas: aparecen como colonias puntiformes después de 48 horas de incubación.
PROTEUS
Características morfológicas;
La estructura antigénica está compuesta por antígeno somático O, flagelar H y superficial K. El antígeno flagelar H contribuye a la capacidad invasora de las vías urinarias. La variante X del antígeno somático O está presente en algunas cepas de P. mirabilis.
Características coloniales: Crecen en medios corrientes y moderadamente selectivos a temperatura corporal de 37ºC. Crecen formando capas diseminadas por virtud de su gran motilidad. Existen variantes inmóviles que forman colonias lisas
Microorganismos Características de la
Colonia
Salmonella spp. (Incluyendo S. Typhi, Paratyphi, lactosapositiva,
sucrosa-positiva) magenta
Escherichia coli incolora
Enterobacter spp., Klebsiella spp. azul-verde
Proteus spp. Incolora a marronosa
Pseudomonas spp. Y otras bacterias Gram positivas inhibid
TAXONOMICO: se emplea el término para designar a la taxonomía biológica, la ciencia de ordenar a los organismos en un sistema de clasificación compuesto por una jerarquía de taxones anidados
Fichas taxonómicas:
PROTEUS:
Dominio:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Proteus
PARAMECIUM
Reino:
Protista
Filo:
Ciliophora
Clase:
Oligohymenophorea
Orden:
Peniculida
Familia:
Parameciidae
Género:
Paramecium
ESCHERICHIA COLI
Reino:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Escherichia
SALMONELLA
Reino:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Gamma Proteobacteria
Orden:
Enterobacteriales
Familia:
Enterobacteriaceae
Género:
Salmonella
BRUCELLA
Dominio:
Bacteria
Filo:
Proteobacteria
Clase:
Proteobacteria alfa
Orden:
Rhizobiales
Familia:
Brucellaceae
Género:
Brucella
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